可變剪接（AS）在細胞分化和發育過程中受到嚴密調節。AS事件在睪丸中普遍存在，但剪接在精子發生中的調控仍不清楚。本文發現剪接體成分Bud31介導的AS事件在小鼠精子發生過程中起著至關重要的作用。Bud31介導的AS是精原干細胞（SSC）調節哺乳動物雄性生殖細胞的自我更新和分化所必須的。本實驗采用構建生殖細胞特異性Bud31敲除小鼠，細胞培養，生精細胞的富集，RT-qPCR，免疫印跡，免疫組化，免疫熒光，HE染色，染色體彌散免疫熒光分析，SMART-seq，可變剪接和剪接效率分析，RIP-Seq，RNA pull-down，熒光素酶檢測，微基因分析的實驗方法。

技術路線：

主要實驗結果：

1、生殖細胞特異性Bud31基因敲除導致雄性完全不育

剪接因子的表達水平在細胞分化發育過程中受到嚴格調控。為描述參與精子發生的剪接因子，作者使用公開RNA-seq數據集（E-MTAB-6798）進行分析，在小鼠精子發生的不同階段的睪丸中鑒定到134個已知剪接因子。其中10個剪接因子在出生后才開始表達，這是精原細胞增殖開始的時候（圖1A）。同時，使用E-MTAB-6798分析AS事件，發現AS事件在P3時顯著增加，與P0相比，在P28時達到峰值（圖1B）。剪接體組分Bud31是剪接體組裝和催化活性所必需的，它的表達模式與其他剪接事件在時間上協調，所以選擇它進行深入研究。此外，Bud31和未分化精原細胞的標記物Dazl的免疫熒光共染色顯示，在P4時，Bud31存在于生精小管Dazl陽性細胞中，且主要定位于細胞核（圖1C）。

為闡明Bud31在精子發生中的潛在作用，將VASA-Cre轉基因小鼠與Bud31-floxed小鼠雜交，構建生殖細胞特異性Bud31敲除小鼠（Bud31- vKO）。對輸精管生殖細胞標記物DAZL和Bud31進行免疫染色，證實Bud31- vKO小鼠生殖細胞P4時Bud31缺失（圖1D）。此外，與同窩對照小鼠相比，Bud31-vKO小鼠的睪丸要小得多（圖1E）。與這種表型一致，蘇木精染色顯示Bud31-vKO小鼠睪丸中的生殖細胞數量與同窩對照組相比顯著減少（圖1F）。支持細胞標記物Sox9和生殖細胞標記物Gcna的免疫熒光共染顯示，在Bud31-vKO的睪丸中完全沒有Gcna陽性細胞，但對照小鼠在P10時睪丸中存在Gcna（圖1G）。這些結果表明Bud31是精子發生所必須的。

圖1生殖細胞特異性Bud31基因敲除導致雄性完全不育

2、Bud31敲除導致SSC自我更新嚴重缺陷

為探究Bud31-vKO小鼠生殖細胞丟失的原因，進行SSC標志物Plzf的免疫組化，發現其在正常小鼠表達在Bud31-vKO小鼠丟失。為了研究Bud31-vKO小鼠SSC缺失的發生時間，在Bud31- vko和對照小鼠的P1、P2、P3、P4和P5的輸精管中分別對Bud31和Plzf進行免疫染色。與對照組比較，Plzf陽性細胞顯著丟失的第一個時間點是P4（圖2A-B）。此外，對Bud31-vKO小鼠P5時期的生精小管進行SSC另一個標志物Lin28a免疫染色，結果顯示共表達Lin28a和Plzf的細胞數量顯著低于對照組（圖2C）。用qPCR檢測P4睪丸中SSC標記（Plzf、Lin28a、Gfrα1和Id4）的表達，與對照組相比，Bud31-vKO睪丸中這些標記的表達水平顯著降低（圖2D）。流式細胞儀分析顯示，與對照組相比，Bud31-vKO睪丸P4時表達SSC表面標記物Thy1而不表達c-Kit的細胞數量從3.4%下降到2.26%（圖2E）。證實SSC的數量早在P4時就減少了。對來自P4時期的Bud31-vKO和對照小鼠的Thy1+/c-Kit^–分選的SSCs進行SMART-seq分析，對差異表達基因的GO和GSEA分析顯示，PI3K-AKT-mTOR信號通路明顯富集，這是正常SSC自我更新的重要通路（圖2F-G）。免疫印跡驗證了P4時期Bud31-vKO小鼠的Thy1+/c-Kit^–SSCs中mTOR信號成分的水平降低（圖2H）。這些結果提示Bud31參與新生小鼠SSC自我更新的調節。

圖2Bud31敲除導致SSC自我更新嚴重缺陷

3、Bud31缺失雄性小鼠生殖細胞無法進入減數分裂

為評估Bud31在雄性減數分裂中的潛在作用，將Stra8-GFPCre小鼠與Bud31^flox/flox小鼠雜交獲得生殖細胞特異性Bud31敲除雄性小鼠（Bud31- sKO）。木素染色顯示Bud31-sKO小鼠的減數分裂細胞在P10和P12時期與同窩對照組相比大幅減少（圖3A）。對P12小鼠輸精管減數分裂標志物SYCP3和γH2AX進行免疫熒光染色，發現Bud31-sKO睪丸的SYCP3和γH2AX雙陽性細胞與對照組相比顯著減少（圖3B）。重要的是，在Bud31-sKO的P12睪丸中沒有觀察到晚于具有瘦素前期樣染色體的精母細胞，而此時在對照睪丸中已經很明顯地發現了豐富的合子染色體（圖3C）。這表明Bud31是生殖細胞進入減數分裂所必需的。

Stra8的表達是生殖細胞進入減數分裂所必需的，在P10小鼠的生精小管中對Stra8進行免疫熒光染色，發現與對照組相比，Bud31-sKO睪丸中的Stra8信號明顯減弱（圖3D）。qPCR檢測顯示，與對照組相比，P10期Bud31-sKO小鼠中Stra8及其已知下游轉錄激活靶點Hoxa1和Cyp26a1的水平顯著下降（圖3E）。qPCR和免疫印跡評估Stra8，與對照組相比，P4期Bud31-vKO睪丸的Stra8水平顯著降低（圖3F-G）。這些結果再次支持Bud31具有調節減數分裂起始的功能。

圖3缺乏bud31的雄性生殖細胞無法進入減數分裂

4、Bud31在生精細胞中調控AS

為探索Bud31在精子發生中對AS的作用，使用rMATS對SMART-seq數據進行AS分析。Bud31缺失導致了總共1948個AS事件（圖4A-B）。隨后分析reads的映射分布，發現Bud31缺失顯著降低了外顯子reads的比例，增加了內含子和基因間reads的比例（圖4C）。此外，利用SMART-seq數據計算剪接效率，發現敲除Bud31后，5 '剪接位點和3 '剪接位點的效率均顯著降低（圖4D），表明Bud31缺失后AS受損。

為確定Bud31在精子發生中的全基因組結合位點和靶點，利用P14野生型小鼠的生精細胞進行RIP-seq，RIP峰值分布分析顯示，Bud31主要定位于pre- mRNA的內含子區域（圖4E）。進一步分析了reads強度，發現Bud31在剪接位點周圍的exon-intron區域高度富集（圖4F）。此外，使用HOMER算法來識別Bud31識別的RNAmotif，發現最豐富的元件是UUUAAAA和GAGGCAGG（圖4G），這對識別潛在的結合位點很有用。

為在生精細胞中識別Bud31調控的AS候選靶點，將來自RIP-seq數據中的Bud31結合基因（3258個基因）與來自SMART-seq數據集的AS相關基因（1591個基因）進行了比較，并鑒定出392個交集基因（圖4H）。對392個基因進行通路富集分析，發現包括減數分裂細胞周期和細胞分裂在內的通路高度富集（圖4I）。以上結果表明Bud31在生精細胞中調控AS。

圖4 Bud31在生精細胞中調控AS

5、Bud31缺失導致Cdk2第一個內含子的保留增加

為確定導致Bud31cKO小鼠表型的靶點，在Bud31缺失時檢測了392個基因和701個下調基因（圖4J）。發現12個基因，包括Cdk2，Ccdc62和Lbr都是差異剪接和下調的（圖4K）。作者關注Cdk2，它對小鼠的生存能力并不重要，但其缺失已被證明會導致男性不育[29]。SMART-seq分析顯示，Bud31的中斷導致Cdk2前mRNA的第一個內含子的保留（圖5A，上），RIP-seq數據支持Bud31結合Cdk2的內含子1（圖5A，下）。用半定量RT-PCR方法驗證Bud31對Cdk2的影響，該方法在P10Bud31-sKO和同源對照小鼠的睪丸中使用了同源引物（圖5B）。為獲得進一步的證據，構建了跨越內含子1的小基因，并通過將小基因與Bud31siRNA結合轉染GC-1細胞來進行剪接試驗。Bud31的耗竭顯著增加了Cdk2的內含子保留的轉錄物（圖5C）。用qPCR分析了P10睪丸中長短異構體的比例，觀察到Bud31缺失后Cdk2的長短異構體比例明顯增加（圖5D）。此外，為證實Bud31對Cdk2的影響，進行剪接報告試驗。使用siRNAs對Bud31進行敲除，顯著降低了由含Cdk2內含子1的報告片段編碼的熒光素酶活性（圖5E）。為獲得Bud31與Cdk2直接結合的進一步證據，使用Bud31抗體在P14小鼠睪丸中進行RIP試驗，如預期地，RIP-qPCR顯示Bud31與Cdk2pre-mRNA的內含子1結合（圖5F）。此外，RNA pull-down實驗顯示Bud31被生物素標記的Cdk2探針成功下拉（圖5G）。

內含子保留可以在轉錄后水平上減少基因表達。因此，在P10小鼠睪丸中進行qPCR，發現與對照組相比，Bud31-sKO小鼠睪丸中的Cdk2表達明顯下調（圖5H）。還發現，在GC-1細胞中，由siRNA介導的對Bud31的敲除導致Cdk2水平明顯降低（圖5I）。免疫印跡法進一步證明，與對照組相比，Bud31-vKO小鼠睪丸中這兩種蛋白的異構體都明顯減少（圖5J）。這些發現表明，Bud31的缺失導致內含子1的保留，從而導致Cdk2的表達減少。總之，這些數據表明，Bud31介導的替代剪接參與精子發生的調節。

圖5Bud31缺失導致Cdk2第一個內含子的保留增加

參考文獻：

Qin, J., Huang, T., Wang, Z. et al. Bud31-mediated alternative splicing is required for spermatogonial stem cell self-renewal and differentiation. Cell Death Differ 30, 184–194 (2023). https://doi.org/10.1038/s41418-022-01057-1